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报告Evaluation of Pesticides for Control of Konjac Soft-Rotting Bacteria
出版时间:2007Konjac glucomannan(KGM),derived from the tuber of Amorphophallus konjac C.koch,has traditionally been consumed as rubbery jelly,noodles,and other food products in Asia for centuries.It is also used as food additives in Western countries.Clinical studies have indicated KGM supplement normalizes the mouth-to-cecum transit time and relieves constipation for children and adults[1].In order to meet the increasing demand for konjac,more area is employed to plant A.konjac C.koch.With the increase of plant area,some diseases have appeared,and soft rot is the severest one.Huang et al.[2] showed that konjac soft rot was caused by Erwinia carotovora subsp.carotovora.E.carotovora subsp.carotovora is a plant pathogen responsible for producing soft rots in many vegetable and floricultural crops,and responsible for significant economic losses to the konjac industry each year for the causal agent of tuber soft rot[3].Tuber contamination can occur in field and in storage.Infection may occur at any stage of post-harvest handling including washing,grading and packing.Symptoms may develop slowly during cold storage;as temperature increases and conditions become favorable for disease development,thepathogen proliferates,resulting in rapid tissue breakdown.Contaminated tubers that are used as seed,may cause disease problems in field[4].Bacterial soft rot caused by E.carotovora subsp.carotovora occurs worldwide and is one of the most destructive diseases of plant's tubers(e.g.,potato,konjac).Many researchers have demonstrated the potential of control of soft rot of potato etc.Several salt compounds were tested in vitro as inhibitors of E.carotovora subsp.Carotovora[4].Acidified Oxine was demonstrated to be potentially effective in preventing potato spoilage(caused by E.carotovora)without any significant risks of chemical residual or change of skin color[5].Harris[6] found a chemical compound of 5-nitro-8-hydroxyquinoline was the most effective in control of potato soft rot.Biological control is an alternative[7].Cladera-Olivera et al.[8] showed that the soft rot bacterium E.carotovora from potato was inhibited by a novel bacteriocin-like substance produced by Bacillus licheniformis P40.Biological control offers an environmentally friendly alternative to the use of pesticides for controlling plant diseases.Unfortunately,growers continue to use chemical control over biological agents,and lack of knowledge often contributes to the downfall of a biocontrol agent.Knowledge of the biological environment in which the agent will be used and of how to produce a stable formulation are both critical to successful biocontrol[9]. And also,biological products may not consistently provide a high level of disease control[10].Therefore agricultural disease is controlled mainly with pesticides.Numerous pesticides have been tested for efficacy against soft rot E.carotovora on potatoes[11,12],but little was done on the soft rot of konjac tubers.Current control strategies aim to reduce soft rot of konjac tubers in field and storage by employing pesticides.In China,a wide range of pesticides is registered for control of bacterial soft rot of crops.However,there is no special pesticide for konjac soft rot,and most pesticides didn't control konjac soft rot effectively.Therefore,growers were driven to use pesticides blindly.Unreasonable use of pesticides has not only given rise to serious environmental problems,but also caused great waste of resources.The aim of this research was to evaluate seven pesticides and their effect on inhibition of soft-rotting bacterium from Konjac.Strains of E.carotovora subsp.carotovora were provided by Hubei Key Laboratory of Natural Product Research and Development,China Three Gorges University,Hubei Province,China.Pesticides were bought from a pesticide market in Yichang city,Hubei Province,China.The active constituent of each pesticide was Streptomycin,Carbendazim,Kasugamycin,Thiophanate+methyl,Oxadixyl+Mancozeb,Mancozeb or Phosethyl-Al+Mancozeb.Pesticides were prepared according to their instructions using sterile pure water to obtain the maximum concentrations.The in vitro screening trial of antimicrobial activity of seven pesticides was carried out by disk diffusion test[13] using 100μl of suspension containing 108 CFU/ml of bacterium spread on nutrient agar.Small filter disks were generated using a standard 6mm hole puncher andsterilized by autoclaving,and then dried at 80℃.Paper disks were dipped into each solution for 1min in order to assure that paper disks had been saturated with a pesticide solution,whereas those of the controls were dipped into sterile pure water.The inoculated plates with E.carotovora subsp.carotovora were incubated at 27℃ for 24h.The diameter of the clear zone around the disk was measured and expressed in millimeters as its antibacterial activity.The net zone of inhibition was displayed by subtracting the disk diameter(6mm)from the total zone of inhibition around the disk.Five disk per plate and three plates were used,and each test was run in triplicate[14].The MIC and MBC were determined by a modification of the broth microdilution method as previously described by Fazeli et al.[15].And there were five dose points(by two-fold serial dilutions from maximum concentrations according to the instructions)tested in this study.Pesticide was prepared in sterile Nutrient broth to reach a series of two-fold dilutions.Bacterial cultures were diluted in Nutrient broth from the stock of 108 CFU/ml before they were added to the pesticide preparations.Final concentration of bacteria in individual tubes was 1~5×105 CFU/ml.Control tubes contained no pesticide.After 24h incubation at 28℃ the test tubes were examined for possible growth and MIC of each pesticide were determined as the lowest concentration that ended with no growth.Tubes containing pesticide concentrations above the MIC were streaked onto nutrient agar plates to achieve MBC of pesticide against the tested strain.Each experiment was performed in triplicate.The data were statistically analysed by using the one-way ANOVA(SPSS 12.0 for Windows),and were expressed as mean±standard deviation(SD).The differences between treatments were also compared.A P value of less than 0.05 was considered statistically significant.According to the results(Table 1),both Oxadixyl-Mancozeb and Mancozeb showed antibacterial activities at the maximum concentrations within the applied concentration range according to the instructions.The growth of E.carotovora subsp.carotovora was inhibited by Oxadixyl+Mancozeb at concentration of 1μg/ml,and the inhibition zone reached(5.33±0.71)mm.At the concentration of 1μg/ml,Mancozeb inhibited the growth of tested bacteria,and the inhibition zone diameter was(4.22±0.83)mm.Streptomycin,Carbendazim,Kasugamycin,Thiophanate+methyl and Phosethyl-Al+Mancozeb didn't expressed antibacterial activity against E.carotovora subsp.carotovora.MIC and MBC of Oxadixyl+Mancozeb and Mancozeb were determined.Oxadixyl+Mancozeb and Mancozeb were found to have the same MICs and the same MBCs.The MICs of both pesticides were 0.25μg/ml,and MBCs were 1μg/ml(Table 2).ActiveconstituentsoftestedpesticidesInhibitionzone(mm)Streptomycin(0.18μg/mla)0bCarbendazim(0.8μg/ml)0Kasugamycin(0.4μg/ml)0Thiophanate+methyl(0.5μg/ml)0Oxadixyl+Mancozeb(1μg/ml)5.33±0.71cMancozeb(1μg/ml)4.22±0.83Phosethyl-Al+Mancozeb(0.4μg/ml)0Table 1 Antibacterial activities of seven pesticides agaist E.carotovora subsp.carotovoraAccording to the results(Table 2),both Oxadixyl-Mancozeb and Mancozeb showed strong bactericidal activity with the MBC at 1μg/ml.E.carotovora subsp.carotovora was sensitive to both Oxadixyl+Mancozeb and Mancozeb.ActiveconstituentsofpesticideMIC(μg/ml)MBC(μg/ml)Oxadixyl+Mancozeb0.251Mancozeb0.251Table 2 MIC and MBC of Oxadixyl-Mancozeb and Mancozeb against tested bacteriumMany studies showed that Streptomycin,Carbendazim,Kasugamycin,Thiophanate+methyl,Oxadixyl+Mancozeb,Mancozeb and Phosethyl-Al+Mancozeb could control konjac soft rot caused by E.carotovora subsp.Carotovora[16~19].But,the bacterial soft rot is still a major problem encountered in konjac during postharvest storage and in field.The soft rot bacterium Erwinia carotovora was not inhibited by some pesticides used by people.This problem could be attributed to unreasable use of pesticides,so it is necessary to assess effect of each pesticide before application.Seven pesticides were screened against the soft rot pathogens of konjac tubers.Oxadixyl+Mancozeb and Mancozeb were the only pesticides which completely prevented infection at concentration of 1μg/ml according to their instructions.Nevertheless,Streptomycin,Carbendazim,Kasugamycin,Thiophanate+methyl and Phosethyl-Al+Mancozeb didn't exhibit antibacterial activities against soft-rot causing strain at their higher applied concentrations.Therefore when growers faced severe problems with soft rot,they employed a lot of pesticides to protect konjac tuber,but the disease couldn't be controlled effectively.Oxadixyl+Mancozeb and Mancozeb inhibited soft rot bacterium at 0.25μg/ml,but did not give complete protection against infection for longer time.In order to control konjac soft rot,these pesticides could not be used at a concentration lower than 1μg/ml.According to these observations,we can speculate that Oxadixyl+Mancozeb and Mancozeb could be used to control konjac soft rot in field and storage conditions.Even though Mancozeb had the same MIC and MBC as Oxadixyl+Mancozeb,its diameter of the net zone of inhibition was significant differences from that of Oxadixyl+Mancozeb at 1μg/ml(P<0.05).Oxadixyl+Mancozeb expressed strongerbactericidal activity against E.carotovora subsp.carotovora.Mixtures of certain pesticides may act synergistically to augment the inhibition of disease development[4].Study of the antibacterial activity of compounds in vitro may have application in protecting plant from developing disease[20~22].Pesticides that showed no inhibition of soft rot bacterium in the present study included Streptomycin,Carbendazim,Kasugamycin,Thiophanate+methyl and Phosethyl-Al+Mancozeb.Therefore,although all of these pesticides were always employed to prevent and cure soft rot disease,the loss of soft rot is still severe.When used at the manufacturer's recommended concentration,Oxadixyl+Mancozeb and Mancozeb all displayed antibacterial activities against soft-rot causing bacterium.There is no special pesticide for konjac soft rot in China,and the database(a list of marketing companies is available on the database)does not give details of what problems each pesticide controls from the company that produces the pesticide,in vitro study maybe give the growers suggestions about choosing pesticides.Before growers buy or use any pesticide,ask themselves whether it is really necessary to control the disease that they want to get rid of.Therefore protection of konjac with suitable pesticides becomes a necessity.Chemical pesticides play a great role in eliminating agricultual pathogens,but because pesticides are used blindly and not scientifically,environment are polluted seriously.This paper approached ways of selecting pesticides to control konjac soft rot,using scientifically and effectively chemical pesticides,for the purpose of reducing environmental pollution,and protecting environment.Although the current study indicates that there is potential for the use of several pesticides as chemical agents to control disease caused by E.carotovora subsp.carotovora,further studies are needed to examine possible inhibitory effects in vivo.More research is also needed on the delivery methods for effective use strategies including spray application during post-harvest handling,application timing at growth stage or application as preservatives in storage facilities[4].In summary,our data demonstrate that pesticides of Oxadixyl+Mancozeb and Mancozeb inhibited the activity of konjac soft-rot causing bacterium.This disease could be controlled with chemicals such as Oxadixyl+Mancozeb and Mancozeb.Moreover,Oxadixyl+Mancozeb expressed stronger antibacterial activity than Mancozeb.Even though pesticides of various kinds(e.g.,Streptomycin,Carbendazim,Kasugamycin,Thiophanate+methyl,Phosethyl-Al+Mancozeb)have been used on a large scale in China to protect crops from damages inflicted by diseases,none of them were inhibitors of the soft rot pathogen at their recommended concentrations.This work was supported by the Scientific Research Foundation of China Three Gorges University(No.0620060113)and Hubei Provincial Department of Education(No.Q200713002). -
报告Review of the Mechanism of Action and Resistance of Systemic Fungicides used for Controlling Oomycete Disease
出版时间:2007Cavalier-Smith(1981;1988)提出将细胞生物分为八界,《真菌词典》第八版(1995)和第九版(2001)均接受了这一分类系统。在这一分界系统中,卵菌门(Oomycota)属于色菌界(Chromista),有1纲9目及其他地位待定的4目,其中引起植物病害的有水霉目(Saprolegniales)、腐霉目(Pythiales)、指梗霉目(Sclerosporales)和霜霉目(Peronosporales)[1]。卵菌门的共同特征是游动孢子具有一根茸鞭和一根尾鞭,鞭毛呈直管状,有性生殖为卵配生殖,线粒体呈脊管状。在许多方面卵菌与真菌有明显差异,而与藻类更为相似,因此又称卵菌为假真菌(pseudofungi)。卵菌中有许多是重要的植物病原菌,它们的世代短,产孢量大,潜育期短,再侵染次数多,对寄主植物的破坏性强,流行速度快,造成严重的经济损失[2]。在对卵菌的综合防治的措施中,化学防治仍然是控制卵菌病害的主要手段之一,但目前生产中普遍发生了卵菌对现有杀菌剂的抗药性问题,这对当前农业的发展构成了严重的威胁[3]。随着显微技术、化学分析技术和分子生物学的发展,已经能从病原真菌的形态、生理生化和分子等不同水平进行杀菌剂作用机理和抗药性机理的研究[4]。本文就目前常用的四类内吸性杀菌剂对卵菌的作用机理及抗性机理进行了概述,希望能对杀菌剂的合理使用和新型杀菌剂的开发提供一定的理论基础。病害名称病原物病害名称病原物十字花科白锈病白锈菌(Albugocandida)马铃薯晚疫病致病疫霉菌(Phytophthorainfes-tans)谷子白发病禾指梗霉菌(Sclerosporagra-minicola)瓜类疫病掘氏疫霉菌(P.drechsleri)烟草猝倒病瓜果腐霉菌(Pythiumaphanider-matum)辣椒疫病辣椒疫霉菌(P.capsici)黄瓜霜霉病古巴假霜霉菌(Pseudoperonospo-racubensis)柑橘褐腐柑橘褐腐疫霉菌(P.citrophthora)葡萄霜霉病葡萄生轴霜霉菌(Plasmoparaviticola)表1 我国卵菌引起的主要植物病害苯基酰胺类杀菌剂的特点是低毒,选择性强,可以被植物的根、叶和幼茎迅速吸收,并通过导管和细胞间隙等质外体系统向植株上部转移[5]。目前我国使用量较大的有甲霜灵(瑞毒霉)、恶霜灵和湖南省化工研究院开发的苯霜灵等。Dr.P.A.Urech在1977年研究开发了甲霜灵,它是苯基酰胺类杀菌剂中第一个商品化的品种,其特点是病菌在植物体内形成吸胞后抑菌作用才能发挥,对卵菌侵入寄主前的各阶段,如游动孢子的释放、萌发和侵入的抑制作用不明显,但对侵入寄主后的各阶段,如菌丝在植物体内的生长、吸器形成及孢子囊的产生等有显著的抑制作用[6]。最初对苯基酰胺类杀菌剂容易引起病原菌抗药性的问题并未引起注意,直到 1981年荷兰的Dekker发现甲霜灵单剂在葡萄上使用仅一个季度就发生田间抗药性之后才给以重视。Davides等[7]、Shattock等[8]先后证实,甲霜灵的杀菌机理是抑制卵菌的核糖体 RNA聚合酶的活性,从而抑制病菌 RNA 的合成,干扰病菌在寄主体内的发展。特别是 γ-RNA的合成,最敏感的是使尿苷掺入 RNA受阻,但不影响尿苷的吸收和尿苷转化为尿苷酸。用不同种的菌试验结果说明,RNA合成受阻的程度不同,通常达 40%~80%,这表明不是全部的 RNA合成受阻。现已知道有3种RNA的聚合物担负着细胞内核苷酸的聚合。这3种聚合酶称为聚合酶A、B、C,A主要是负责核糖体内γ-RNA的合成,B是用于m-RNA的合成,C则用于 t-RNA和5SRNA 的合成。这3种酶一般是用对α-鹅膏碱的敏感性来区分的。甲霜灵和其相似物对3种酶有选择性抑制作用,主要是对聚合酶A的毒力最大,也就是γ-RNA的合成受阻,核糖体就不正常。因此,对菌的生长有抑制作用,但是对菌的孢子囊的直接和间接萌发以及游动孢子的萌发都没有影响[9~11]。通过对抗药和敏感菌株杂交后代的分析,表明抗药性是由隐性的单基因或核内的单作用位点控制,发展速度快,抗性水平高,抗药菌株遗传稳定,适合度、致病力几乎与野生的敏感菌相同,故经过施药的选择敏感菌很快消亡,抗性菌在群体中得以繁殖发展,并很快成为优势种群,出现田间突然药剂失效[12]。研究表明敏感菌系细胞核中有编码敏感 RNA 聚合酶的基因,而抗性菌系则不含这个基因,因而对药物的反应不敏感而表现抗药性。同时苯基酰胺类杀菌剂之间具有正交互抗性,这给该药剂的进一步开发带来了很大的困难[13,14]。丙烯酰胺类杀菌剂中对卵菌病害有很好防治效果的药剂主要有烯酰吗啉和氟吗啉,其作用机理基本上都是抑制菌体内麦角甾醇的生物合成。麦角甾醇是菌体细胞膜的重要组成部分,它与膜脂中的碳氢键相互作用,有保持膜的流动性和稳定膜分子结构的重要作用。如果麦角甾醇生物合成受阻,膜的结构和选择性屏障作用就受到损害,造成细胞内物质的泄漏,最后导致菌体死亡。用丙烯酰胺类杀菌剂处理真菌后往往能使芽管短而膨胀、过度扭曲,菌丝分枝增加。烯酰吗啉在1988年由Shen Group公司研制开发。烯酰吗啉可强烈抑制游动孢子囊的形成、休眠孢子的萌发和菌丝生长,但不影响游动孢子的释放。与菌丝细胞壁合成相比,孢子囊壁的合成对烯酰吗啉更为敏感。Bartnicki[15]认为由于休止孢萌发和芽管伸长这些阶段菌体内有相对较少碳水化合物来调节渗透压和形成细胞壁,所以烯酰吗啉作用后细胞壁容易产生破裂。Kuhn等[16]和Albert等[17]研究表明烯酰吗啉能导致菌丝生长过程中细胞壁畸形和加厚,最终导致菌丝顶端破裂,认为烯酰吗啉明显干扰了病原菌的形态调节因子或抑制细胞壁结构的正确组合,影响细胞壁的合成。烯酰吗啉1992年获得注册登记并投放市场,尽管已经使用多年,但国内外的室内和田间实践均证明,烯酰吗啉在田间表现为低抗药性风险。Dereviagina等[18]对田间采集的110株马铃薯晚疫病菌的测定发现,存在0.3%~0.8%的抗烯酰吗啉突变体,但抗性菌株的适合度低,而且在连续转代培养过程中抗性丧失。Bagirova等[19]在室内通过化学诱变获得了马铃薯晚疫病菌对烯酰吗啉的抗药突变体,但突变频率低,而且突变株的适合度明显下降。王文桥等[20]获得了葡萄霜霉病菌抗烯酰吗啉的突变体,但未获得马铃薯晚疫病菌的抗药突变体。袁善奎等[21]对马铃薯晚疫病菌抗烯酰吗啉突变体的研究结果与以上学者的报道一致,没有获得高抗药性水平的突变体,但突变体的抗性比较稳定。甲氧基丙烯酸酯类杀菌剂是以天然抗生素Strobilurin A为先导化合物而开发的新型杀菌剂,自1969年Musikek及其合作者首先报道以来,对此类化合物的研究已成为杀菌剂开发的新热点。这类杀菌剂具有杀菌谱广和杀菌活性高的特性,具有保护、治疗、铲除、渗透作用,对环境和非靶标生物安全[22]。甲氧基丙烯酸酯类杀菌剂的作用位点独特,不同于以往任何抑制剂作用于呼吸链上的位置。Cyt bc1呼吸抑制剂有两类:一类是位于线粒体内膜内壁Qi位点(CoQ的还原位点)的cyt b高势能血红色素结合的抑制剂,这类抑制剂称为Qi位点抑制剂,简称QiIs,如抗霉素,cyanoimidazole等。另一类与位于线粒体内膜外壁的Qo位点(CoQ的氧化位点)的cyt b低势能血红色素结合的抑制剂,这类抑制剂称为Qo位点抑制剂,简称QoIs,如甲氧基丙烯酸酯类杀菌剂、咪唑菌酮、唑菌酮等[22,23]。甲氧基丙烯酸酯类杀菌剂为能量生成抑制剂,其作用机理是通过与真菌细胞色素b上的辅酶Q0氧化中心结合,阻止细胞ATP的合成,影响能量代谢,从而抑制线粒体的呼吸作用。这种作用阻止氢醌(QH2)向Fe-S中心传递电子,而不是直接阻止与氢醌的结合[24~26]。细胞色素b属于细胞色素bc1复合体的一部分,位于真核生物线粒体膜的内侧,一旦某个抑制剂与之键合,它将阻止细胞色素b和c1之间的电子传递,阻止ATP的产生而干扰真菌内的能量循环,从而杀灭病原菌。在甲氧基丙烯酸酯类杀菌剂开发和应用的早期,人们认为这类杀菌剂的抗性风险是中等水平,但是1998年德国使用苯氧菌酯防治小麦白粉病2年后发现防效明显下降,原因是小麦白粉病菌产生了抗药性,而且抗药性个体的适合度很高。目前认为这类杀菌剂的抗药性风险是高水平[26]。已经报道QoIs的两种类型的抗药性机理[27,28]。第一种是细胞色素b基因上的氨基酸序列发生改变,从而降低了与药剂的亲和力,主要是143位甘氨酸被丙氨酸取代(G143A)(如黄瓜霜霉病菌、小麦白粉病菌、葡萄霜霉病菌等)和129位苯丙氨酸被亮氨酸取代(F129L)(如稻瘟病菌)。由于cyt bc1基因是线粒体编码的,其抗性遗传方式表现为母性遗传。第二种抗性机理涉及电子传递链中旁路氧化酶(Alternative Oxidase,AOX)的活性,通过旁路途径减少甚至消除QoIs对病菌电子传递的抑制作用。(咪)唑类杀菌剂活性高、作用机理独特,与现有杀菌剂无交互抗性,能与多种杀菌剂混配,可有效缓解内吸性杀菌剂的抗性问题。唑菌酮由杜邦公司开发,对锈病、霜霉病、晚疫病等均具有良好保护、治疗、渗透、内吸等作用。它对病原菌在生长过程中所释放出的孢子影响最大,药剂一旦与孢子接触,孢子即停止活动,出现崩死。另外,对孢子的萌发和菌丝的伸长也有一定的抑制作用[30]。唑菌酮能抑制病原菌线粒体的电子传递,主要阻断细胞色素b和细胞色素c之间的电子传递通道中ADP-ATP的氧化磷酸化作用,使病原菌无法产生所必需的能量。417407唑菌酮也是QoIs,作用机理同于甲氧基丙烯酸酯类杀菌剂。由于分子结构的差异,它与cyt b的结合方式不同[31]。唑菌酮能抑制病原菌线粒体的电子传递,主要阻断细胞色素b和细胞色素c之间的电子传递通道中ADP-ATP的氧化磷酸化作用,使病原菌无法产生所必需的能量。417407唑菌酮也是QoIs,作用机理同于甲氧基丙烯酸酯类杀菌剂。由于分子结构的差异,它与cyt b的结合方式不同[31]。类型代表品种杀菌机理抗药性风险水平苯基酰胺类甲霜灵恶霜灵苯霜灵抑制卵菌的核糖体RNA聚合酶的活性,从而抑制病菌RNA的合成,干扰病菌在寄主体内的发展作用位点单一,容易产生高水平抗药性突变菌株丙烯酰胺类烯酰吗啉氟吗啉抑制菌体内麦角甾醇的生物合成,造成细胞内物质的泄漏,最后导致菌体死亡突变频率低,突变菌株适合度差,表现为低抗药性风险甲氧基丙烯酸酯类嘧菌酯苯氧菌酯烯肟菌酯通过与细胞色素b上的辅酶QO氧化中心结合,阻止细胞ATP的合成,从而抑制线粒体的呼吸作用单一位点的突变,表现为高水平的抗药性(咪)唑类唑菌酮咪唑菌酮阻断细胞色素b和细胞色素c之间的电子传递通道中ADP-ATP的氧化磷酸化作用,抑制病原菌线粒体的电子传递田间使用较少,抗药性风险水平暂时不明确表2 防治卵菌病害的内吸性杀菌剂的主要类型、代表品种、杀菌机理、抗药性风险水平杀菌剂对病菌的影响是多方面的,其作用位点也相对比较复杂,由于病原菌抗药性的不断出现和抗性程度的不断上升,对研制开发广谱、新型杀菌剂的要求越来越强烈。但化学杀菌剂开发的难度越来越大,开发费用越来越高,开发新型农药的速度远远落后于病原菌抗性发展的速度。因此,明确杀菌剂的作用机理和抗性机理,对创制作用机理独特、环境友好的杀菌剂尤为重要。卵菌的进化一般认为是从水生到陆生,由腐生到专性寄生。卵菌大部分生活在水中或潮湿的土壤中,部分比较高等接近陆生的卵菌主要寄生在高等植物体内。因此,卵菌具有一个共同的特点“亲水—疏油”。因此,在农药剂型的选择上,水剂、水乳剂、水分散粒剂、悬浮剂与卵菌有更好的亲合性,更适合卵菌病害的防治,能更好地发挥药效[32]。在新型农药品种开发的时候,要进行抗性风险评估,采取科学合理的防治措施和使用规范。在未产生抗药性之前推广使用混合制剂,这样能减少选择压力,延缓抗性的产生,延长已开发产品的使用寿命。因此,根据卵菌的生物学特性、卵菌病害循环的规律和药剂的作用机理,要将病害的预测预报、农药剂型、用药规范、作物种类、作物品种、当地的气候条件和当地作物的抗性水平等因素结合起来,综合考虑制定防治策略,才能保证农业的可持续发展和生态环境的和谐发展。 -
报告抗根癌菌剂2号工厂化生产关键技术研究?? 基金项目:北京市科技计划项目(D0705002040191)。
出版时间:2007根癌病是根癌土壤杆菌(Agrobactium spp.)引起的一种顽固性病害,此菌寄主范围广,可侵染93科331个属643个种的植物,包括果树、林木、花卉等多种双子叶植物和部分裸子植物,在生产上造成非常大的损失。调查表明在我国多数种植根癌病寄主植物的地区根癌病均有不同程度的发生。目前生产上明显出现为害的有樱桃、桃树、李子、杏树、葡萄、苹果、梨树、海棠、山楂、核桃、杨树、樱花、玫瑰、月季、啤酒花等果树、林木和花卉,不同地区发生情况不同。根癌病的症状表现是在植物的根部(有时在茎部,所以也称冠瘿病)形成大小不一的肿瘤,初期幼嫩,后期木质化,严重时整个主根变成一个大肿瘤。病树树势弱,生长迟缓,产量减少,寿命缩短,甚至死亡,影响苗圃苗木的质量和成树的生长。重茬苗圃发病率在20%~100%之间不等,发病重的甚至造成毁园。根癌病菌可较长时间的存活在土壤中,从植株的伤口侵入,随苗木的调运进行远距离传播,是土壤传播加苗木传播的细菌性病害。此病菌的致病方式是将其致病质粒上的一段DNA整合到植物的染色体DNA上,随着植物本身的生长代谢来刺激植物细胞增生形成肿瘤,而病原细菌的细胞并不进入植物的细胞。鉴于根癌菌来源于土壤,所以防治的时间应选择在种子或植株接触未消毒的土壤之前进行种子或苗木的处理,从根本上阻止根癌菌的侵入。伤口是根癌菌唯一的侵染途径,所以保护伤口是最好的防治切入点。根癌菌具有非常特殊的致病机制,一旦有根癌症状表现就证明T-DNA已经转移到植物的染色体上,再用杀细菌剂杀细菌细胞已无法抑制植物细胞的增生,更无法使肿瘤症状消失。目前,利用抗根癌菌剂对植物根癌病进行生物防治是非常实用可行的方法。中国农业大学植物病理学系细菌课题组利用引进的国外K84菌株研制成抗根癌菌剂1号,已经成功用于防治我国多种果树根癌病;并且,分离、筛选到一些具有自主知识产权的根癌病生防细菌,可以弥补国外K84菌株的抑菌谱缺陷。本项目以其中一株高效菌株AE进行研究,以形成可以防治多种植物根癌病的抗根癌菌剂2号,解决国外K84菌株只对核果类果树根癌病有效的问题和局限。以活菌量和抑菌活性为指标,通过单因子和正交试验,从18种液体培养基筛选得到1种相对最适的发酵培养基,明确了在小型发酵罐的发酵条件:温度26~29℃,接种量1.5%~2.5%,罐压0.03~0.05MPa,通气量0.6~0.8(V/V·min)。在发酵培养时,0~6h为迟滞期,6~13h为对数期,13~22h为稳定期,22h以后为衰退期。培养21h细胞数量最多,达到1.6×1012cfu/ml;24h时发酵物对根癌菌的抑制作用最强。通过筛选,确定草炭可作为吸附剂,甲基纤维素和黄原胶可作为防护剂和稳定剂,并将发酵终产物制成了10×108 cfu/g的菌剂。该菌剂在室温(20~25℃)保质期约为100天。在不同地区的田间应用示范证明该菌剂对根癌病的防治效果在70%以上,并且防治效果与菌剂的应用方法有密切关系。 -
报告绿色木霉菌Tr9701的抑病机理及其在黄瓜叶片、根部定殖初探
出版时间:2007木霉菌(Trichoderma spp.)广泛存在于土壤及其他基物中,作为生防菌以其生长速度快,产孢量大、作用谱广、作用机制多样、能在植株、土壤中增殖并形成有效群体等诸多优势而备受关注。我们针对蔬菜上常见病害,从土壤中分离、筛选获得对蔬菜病原菌具有较强抑菌活性的绿色木霉菌株Tr9701,通过对其产几丁质酶活性等对其抗病机理进行了初探,同时试验了其在黄瓜叶片、根部的定殖能力,为今后开发可替代某些化学农药的微生物杀菌剂做了基础性工作,现将初步研究结果记述如下。1.1.1 供试菌株 绿色木霉Tr9701(Trichderma viride),由天津市植物保护研究所生防室筛选、鉴定。供试病原菌立枯丝核菌(Rhizoctonia solani)、番茄灰葡萄孢霉(Botrytis cinerea),由天津市植物保护研究所病害室分离、鉴定。1.2.1 绿色木霉菌制剂几丁质酶检测据Harman等的方法[1],在胶体几丁质培养基中培养绿色木霉菌,进行产几丁质酶预试验,然后将绿色木霉菌分生孢子液接种到合成诱导液体培养基中诱发几丁质酶产生,以不加胶体几丁质为阳性对照,在28℃,150r/min振荡培养,连续提取培养液制备几丁质酶粗提液。检测采用还原糖法[2]处理,在试管中加入几丁质酶粗提液、10g/L胶态几丁质各1ml,37℃恒温水浴30min,加入DNS10ml,混匀后沸水浴10min,用水冷却至室温,观察颜色变化,以100℃高温灭活处理15min几丁质酶粗提液为对照,试验重复3次。1.2.2 绿色木霉几丁质酶粗提液对病菌的抑菌活性测定 将黄瓜立枯丝核菌、番茄灰葡萄孢霉菌菌丝块转移到平板上,每平皿接种4块,分布于4角,平皿中心放滤纸片并加入100μl几丁质酶粗提液或阳性对照液,重复3次,空白加入等量无菌水,定期观察抑菌圈大小。1.2.3 绿色木霉菌对立枯丝核菌重寄生作用的显微观察 将灭菌赛璐玢膜置于直径90mm的水琼脂培养皿上,在平板两侧各植入经活化培养的绿色木霉和立枯丝核菌菌丝块,25℃下对峙培养,待菌丝接触后置于光学显微镜下观察。1.2.4 绿色木霉菌在黄瓜叶片和根部的定殖 取菜田表层10cm深处土壤,混腐熟的猪粪和蛭石(按3:1:1比例),过筛后,用150倍甲醛液消毒,边喷边混,喷匀后堆起,盖塑料布闷5天,然后晾晒14天,待残药挥发后铺于苗床待用。同时将冰箱保存的绿色木霉菌活化,转接到小麦粉培养基上,在25℃温度下培养7天,培养基上长满菌丝和孢子后,在组织捣碎机中捣碎、过滤,配成绿色木霉菌孢子悬浮液(5×106个孢子/ml)备用。木霉菌叶面定殖:将培养制成的孢子悬浮液用消过毒的手持喷雾器喷雾,均匀喷至黄瓜叶面正反两面,直到叶面上均匀布满一层细微水珠而不流淌为止。喷雾后1h取第一次样,以后每隔一周取一次样,共4次。每次每处理取的叶片剪成0.5cm见方小片,称量取样叶片加入10倍无菌水中振荡(120r/分)15min。取稀释液0.1ml涂布于木霉选择性培养基上,25℃下培养3~4天,5皿重复,计菌落数。以第一次取样所检测到的菌量为接种量,菌量以cfu/g叶表示。木霉菌根际定殖:将培养制成的孢子悬浮液,均匀浇灌至黄瓜根部,直至黄瓜苗根部土壤全部浸润为止。浇灌后1h取第一次样(地下1~2cm处根围土壤),以后每隔3天取一次样,共4次。检查时,分别称取根围土壤1g,加入无菌水20ml中振荡(120rpm)15min。取稀释液0.1ml涂布于木霉选择性培养基上,25℃下培养3~4天,5皿重复,计菌落数。以第一次取样所检测到的菌量为接种量,菌量以cfu/g叶表示。通过预试验,绿色木霉菌Tr9701在胶体几丁质培养基上生长可以形成显著几丁质酶解透明圈,因此进行了绿色木霉菌几丁质酶的诱导试验。诱导条件下几丁质酶粗酶液加入DNS后变为深棕红色,与阳性对照相比有显著差异,说明绿色木霉菌菌株产生几丁质酶,且经诱导处理的绿色木霉菌几丁质酶产生量明显提高,经检测,在培养第5d时达到最大值。绿色木霉菌Tr9701几丁质酶粗提液对立枯丝核菌、灰葡萄孢霉的抑菌活性在平皿接种后2天内,立枯丝核菌、灰葡萄孢霉菌丝生长迅速,但菌丝接近木霉几丁质酶粗提液接种点周围时,生长缓慢,最后停止,从而形成明显抑菌圈。空白对照无抑菌圈,立枯丝核菌菌丝长满平皿,灰葡萄孢霉菌丝长满平皿并形成大量菌核。试验表明,绿色木霉Tr9701的几丁质酶粗提液对立枯丝核菌、灰葡萄孢霉的抑菌圈直径分别为28mm和15mm,比阳性对照的抑菌圈直径大,其差异达到了显著水平。显微观察显示绿色木霉菌对立枯丝核菌具有较强的寄生能力,绿色木霉菌丝与立枯丝核菌菌丝接触后并列生长或缠绕,有时以钩状结构入侵立枯丝核菌菌丝。在接触后期则观察到被寄生的立枯丝核菌菌丝断裂和消解的现象。2.4.1 绿色木霉菌在黄瓜叶面的定殖 绿色木霉菌在叶面上的定殖动态见表1。由结果可知,绿色木霉菌在叶面环境中由于各种条件的影响,第一周内的菌量比初始菌量降低。此后绿色木霉菌适应了叶面环境,菌量逐渐回升,第14天检测菌量为1.02×104cfu/g叶片。21天后菌量持续下降,尤其是第28天菌量降至0.12×104cfu/g叶片。镜检观察绿色木霉菌Tr9701在叶面喷雾后,主要定殖于叶面气孔周围、腺毛基部及叶面凹陷处。这些位点或是分泌物产生处,或是叶面水分分布较多处,能为绿色木霉菌的生长繁殖提供适宜的条件。同时,这些位点也是其他病原菌的竞争位点,通过绿色木霉菌的人工接种,相比病原菌具有种群数量大,出现早的特点。因此,绿色木霉菌对这些位点的抢先占领,不仅有利于本身的生存,而且使黄瓜叶面受到保护,免于病原菌的侵染。重复调查时间1h3天7天14天21天28天11.241.210.941.150.830.1820.960.950.810.920.660.0831.151.080.860.980.790.1441.371.400.951.030.720.10平均1.181.160.891.020.750.12表1 绿色木霉菌孢子在黄瓜叶片上定殖情况(孢子着生量×104个孢子/g)2.4.2 绿色木霉菌在黄瓜根际的定殖 绿色木霉菌在黄瓜根际土壤中定殖结果见表2。由结果可知,第一周内土壤的菌量比初始菌量降低,可能是在根际土壤环境中,由于各种因素的影响,木霉菌受到一定抑制,此后绿色木霉菌适应了土壤环境,菌量逐渐回升,第14天检测菌量为2.64×104cfu/g叶片。21天后菌量持续下降,尤其是第28天菌量降至0.68×104cfu/g叶片。在调查中发现,绿色木霉菌定殖黄瓜根部能力受水分含量和pH值影响明显,水分偏高或偏低都影响绿色木霉菌菌株在黄瓜根部的定殖,pH偏酸性条件下的定殖量明显高于偏碱性条件下的定殖。重复调查时间1h3天7天14天21天28天12.432.371.852.521.090.6422.692.592.032.731.240.7232.362.321.892.611.080.6542.842.561.942.701.110.71平均2.582.461.922.641.130.68表2 绿色木霉菌孢子在黄瓜根部定殖情况(孢子着生量×104个孢子/g)木霉菌腐生性强,适应性广,生长和繁殖快,可迅速利用营养和占据空间,是当前微生物菌剂控制病害的研究热点[3]。本试验结果表明,我们所筛选的绿色木霉菌Tr9701有较强的产几丁质酶活性,且经诱导处理酶产量明显提高,其酶粗提液经试验对立枯丝核菌、灰葡萄孢霉有显著抑制作用,通过诱导产生的木霉几丁质酶在对于抑制病原菌的生长具有重要意义。经显微观察发现,绿色木霉Tr9701对于立枯丝核菌是通过趋向生长、识别、接触缠绕和穿透,寄生于病原真菌之上,对立枯丝核菌具有较强的寄生能力。此现象证明,当绿色木霉菌遇到立枯丝核菌等病原菌时,受到刺激和诱导,产生溶菌酶,抑制立枯丝核菌等的生长,并可降解菌丝。生防菌在植物表面的定殖能力反映了生防菌在植物表面与病原菌竞争空间和营养的能力。本研究表明,绿色木霉菌可以在黄瓜叶面和根部定殖。据Darah(1991)报道,根圈微生物的分布与沿根的可溶性碳的分布距离有关,微生物量的积累有赖于根分泌物的释放,因此添加一定的营养可以促进绿色木霉Tr9701的定殖。本研究进一步证明,绿色木霉Tr9701产几丁质酶、寄生、定殖能力强,是较好的生防材料。当前由于生防微生物控制植物病害具无污染、价格低廉的优点,具有广阔的应用前景。因此对绿色木霉菌Tr9701的发酵工艺、田间应用范围等有待进一步研究。 -
报告拮抗放线菌B1的初步鉴定及对番茄灰霉病的防效
出版时间:2007番茄灰霉病是由灰葡萄孢(Botrytis cinerea)侵染引起的一种在我国乃至全球分布的重要病害。尤其是保护地番茄,其高湿条件为该病流行创造了有利的发病条件。目前番茄生产由于缺少抗病品种,防治番茄灰霉病仍主要依靠化学防治,多采用速克灵等化学药剂喷雾,但在连续使用的情况下,病菌逐渐产生了抗药性,防效逐年下降。此外,大量使用化学药剂也造成了严重的农药残留问题和环境污染问题。近年来人们通过大量筛选和利用抗灰霉病的有益微生物及其代谢产物,使生物防治日益成为番茄灰霉病控制中的一条重要而有效的途径。作者研究了本实验室筛选的拮抗放线菌B1菌株对番茄灰霉病的生防效应,并对其分类地位进行了初步鉴定,为该菌株的应用与开发提供基础。B1菌株是从北京番茄温室土壤中筛选得到的一株拮抗菌,平板抑菌试验结果表明,它对多种植物病原细菌和真菌有较强的抑制作用,其中对灰葡萄孢的抑制能力最强,抑制率达86.3%。B1代谢产物对番茄灰霉菌的菌丝有扭曲、膨大等致畸效应。室内离体检测表明B1菌株对番茄离体叶片和果实的灰霉病均有较好的防治效果。温室试验证实B1菌株对番茄苗期的灰霉病的防治效果在60%以上。根据B1菌株的形态特征、培养特征、生理生化特性及16S rDNA序列分析结果,将其鉴定为链霉菌属淡紫灰类群(Streptomyces lavendulae)。 -
报告Nano-particles’ Effect to the Survival of Bacillus cereus 905 on the Cucumber Phyllosphere
出版时间:2007在自然界,植物、微生物和环境之间的关系是极其复杂的。只有详细了解生防微生物在植物根际或叶围与病原物及其他生物、植物及其分泌物、土壤及各种环境因子之间的相互作用及其变化规律,才能有效地调控无机、有机环境,更好地发挥生防微生物的防病功能[1]。国内外在探索环境因素在植物与微生物互作过程中的影响方面,已经开展了较多工作,包括温度、湿度、降雨、光照等气候条件,土壤理化性质,作物栽培条件等。在纳米技术出现之前,人们很难认识到自然环境中的纳米颗粒物对微生物的影响。近年来,大气等环境中纳米颗粒(超细颗粒物)的生物效应已开始深入研究[2,3],如光催化纳米二氧化钛对很多微生物都具有杀菌作用[4,5]。这样对于暴露在自然条件下的细菌尤其是叶围微生物,适应这种较为苛刻的环境将是细菌生存的一个重要考验。蜡样芽孢杆菌Bacillus cereus 905菌株是本实验室从植物上分离获得的生防细菌,具有促进植物生长,增强农产品品质和防治多种植物病害的功效[6],并已开发应用于农业生产,取得了预期的经济、生态及社会效益。前期研究发现,离体条件下该菌株在纳米颗粒光催化作用的影响下存活率明显降低。二氧化钛表面产生的·OH和其他如H2O2、O·2等活性氧都参与了灭菌作用[7]。鉴于光催化纳米二氧化钛具有广谱的杀菌作用,我们必须考虑到它对于自然界中有益微生物的影响。本研究以已在生产中应用的有益芽孢杆菌(Bacillus cereus 905)为研究对象,分析纳米TiO2作用下,该细菌在黄瓜叶围存活能力的变化,有助于阐明纳米颗粒对植物叶围微生物的影响。分别称取适量的纳米TiO2(P25,Degussa Co.),高压灭菌,保存于暗处。使用前加入无菌磷酸缓冲液(0.1mol/L,pH 7.0),超声波水浴振荡30min使纳米TiO2均一地分散于溶液中。Bacillus cereus 905(GFP),由中国农业大学植病系生防室分离保存并用GFP标记[8]。将B.cereus 905(GFP)接种至含有相应抗生素的LB培养基,30℃160 r/min悬浮振荡培养过夜,1000×g离心收集菌体,用无菌磷酸缓冲液洗涤菌体两次,收获的菌体重新悬浮于磷酸缓冲液中,菌体浓度由平板活菌计数法来确定。所有试验选择在日光温室生长的,4片真叶龄的健康黄瓜植株(Cucumis sativus cv.CAU NO.32)上进行。用B.cereus 905(GFP)菌悬液(108CFU/mL)喷雾接种叶面,或直接将叶面浸润菌悬液3s钟接种。这样的接种程序可以达到107CFU/叶的接种量。接种1h后用美术喷笔(Airbrush,HD-470,台湾)将TiO2悬浮液(0.2mg/mL)均匀喷雾在接种过的叶面上。使用美术喷笔是为了使TiO2以极小的雾粒(平均体积750μm3)覆盖叶围,既不蘸湿叶面也避免了叶围微生物的空间移动[9]。处理后的植株继续在日光温室内培养一定时间后,取样进行原位观察或平板回收。每个处理,随机取5片叶子,每片叶子随机切割6个1cm×1 cm的组织用以原位观察,用激光共聚焦扫描显微镜(Confocal Laser Scanning Microscope,Nikon EZ-C1)迅速扫描叶的上表面,寻找发绿色荧光细菌,操作要求熟练,防止荧光淬灭。每个取样点,每个处理随机取5片叶子,每片叶子置于预装30mL无菌缓冲液(0.1mol/L磷酸缓冲液,0.1%Bacto-Peptone,pH 7.0)的离心管或灭菌袋中,超声波水浴振荡7min,充分洗脱叶围微生物[10]。叶围洗脱液梯度稀释后,涂布至含有相应抗生素的LB平板上,30℃培养1~2天,通过菌落计数估计B.cereus 905的群体数量。对于纳米二氧化钛光催化杀菌作用机制的研究表明,二氧化钛吸收波长≤387.5nm近紫外光的光能,产生·OH,以及H2O2、O2等活性氧,从而起到杀灭B.cereus 905的作用,纳米二氧化钛本身对于B.cereus 905没有暗毒性[7],则实验中同时设一个低水平的光照条件作为参比。由于是利用太阳光作为光源,能穿透玻璃到达植物叶面并被纳米二氧化钛所吸收利用的光波绝大多数为UVA(320~400nm),在日光温室的一角通过设遮阳网来创造低UVA剂量的光照条件。纳米二氧化钛处理后的植株继续在日光温室内培养8h,立即取样进行原位观察或平板回收。8h内低UVA剂量的光照条件和正常日照条件下的平均UVA辐射强度分别为0.2mw/cm2和1.3mw/cm2。图1 纳米二氧化钛对B.cereus 905(GFP)在黄瓜叶围存活能力的影响Figure 1 The impact of nano-TiO2 to the survival of B. cereus 905 on the cucumber phyllosphere如图1所示,两种不同UVA剂量光照8h后,在纳米二氧化钛的影响下,B.cereus 905的残余量分别降低为对照(纳米二氧化钛浓度为零)的52.4%(0.2mw/cm2)和11.6%(1.3mw/cm2)。对照处理B.cereus 905的存活能力保持在106CFU/叶的水平,甚至在低UVA剂量的光照条件下,纳米二氧化钛处理的B.cereus 905的存活能力也能维持与对照同一数量级的水平;而在高UVA剂量的光照条件下,B.cereus 905的存活能力明显下降,甚至发生数量级的变化,群体数量比对照下降了88.4%。原位观察结果也与平板回收的结果保持一致(见图2)。对每个叶片随机切取组织块扫描观察发现,在所有的处理中不论是单个细菌还是细菌聚集体,它们在叶围的存在位置与叶表面的结构特征有关。叶表面对于细菌来说是一个非常不平坦的生活环境。它实际上是掩藏有许多不同结构的区域的集合体,包括腺毛、钩毛、气孔、表皮细胞和纹理等。大多数观察到的细菌位于叶的纹理或腺毛处,也有一部分位于表皮细胞上或气孔附近。在纳米二氧化钛处理的叶面,观察到的细菌数量较少,并且很难观察到单个细菌,大多数细菌以聚集体的形式存在。Monier J-M和 Lindow SE也发现菜豆叶面菌Pseudomonas syringae以单个细胞的存在形式比以聚集体的形式对于环境的干燥胁迫更为敏感[11]。图2 Bacillus cereus 905(GFP)在黄瓜叶围存活情况(原位观察)Figure 2 The survival of Bacillus cereus 905 on the cucumber phyllosphere(Microscopy of Bacteria in Situ)本研究表明,在正常日照情况下,B.cereus 905的存活能力明显下降,群体数量比对照下降了88.4%。无论是原位观察还是传统的平板回收结果说明,受二氧化钛光催化杀菌作用的影响,有益微生物B.cereus 905在黄瓜叶围的存活能力明显降低,这与在离体条件下得到的结论[7]相一致。鉴于光催化纳米二氧化钛广谱的杀菌作用,我们必须考虑到它对于自然界中有益微生物的影响。对纳米颗粒物生物效应的研究,是一个急需研究的领域。空气及植物表面等许多地方都存在许多纳米级颗粒,对于暴露在自然条件下的细菌,适应这种较为苛刻的环境将是细菌生存的一个重要考验。尤其是随着纳米包膜肥料、纳米土壤改良剂、二氧化钛光合作用促进剂等的产业化,以及农业生产中的投入使用,会使越来越多的人们注意到这一问题。目前对于纳米颗粒作为环境因素对植物、微生物影响的研究并不多见,本文探讨了有益微生物在植物表面受纳米颗粒影响而产生的存活能力问题,但如何创造生防微生物的适宜环境,或改进其对环境的适应能力以提高生防制剂效果的稳定性,还需要进一步深入的研究。 -
报告实施服装品牌战略 提高质量竞争优势
出版时间:2009品牌战略管理,已全面进入以资源、知识为基础的核心能力阶段。企业的耐久性已成为评价企业核心能力的主要指标之一,对于竞争性很强的企业来说这一点优为重要。而决定耐久性的主要因素是企业的品牌、商誉等无形资产,集中体现在企业提供给市场的产品质量、科技含量、服务质量的高低上,这就要求现代企业必须以狠抓质量为核心,打好品牌这一仗,才能在激烈的竞争中永立潮头。中国服装业经历30年改革历程,不仅在质和量上有了很大提高,也创造了国内很多品牌,这些都是走向国际化的很好基础,但与国际知名品牌相比,还有差距,还要在多方面努力提高,比如在准确的市场定位上,工艺精度规范上、企业文化品牌等。在企业发展过程中,积极实施品牌战略,并以此战略为中心,全面整合企业的市场发展战略,质量发展战略、科技发展战略、文化发展战略等,一方面因品牌是一个企业技术水平、经营管理水平、企业文化等综合实力的体现,在企业战略中具有纲领性的意义。通过实施品牌战略,可以对企业各种资源进行整合和开发,充分发掘企业的发展潜能,把品牌战略作为企业发展的中心战略是企业发展的形势需要。质量是产品的基石,是企业的生命,今天的质量,就是明天的市场。通过狠抓质量管理,促进市场开发,实现企业滚动发展。产品质理管理是确定质量的具体标准,并保证标准的实现。由于产品贯穿于设计、试制、成品投产、销售和售后服务的全过程,因此,技术、生产、供销、动力、设备等各部门要协同一致,共同抓好产品质量管理。为避免产生人力、物力、财力上不必要的浪费,提高正品率,减少返修率,提高产品技术含量和品牌质量,要把好从原材料进厂到成品出厂的各道质量关,(包括样板、裁剪、缝制、熨烫、检验、锁钉、包装、出厂等)明确责任,层层检验把关。从管结果变为管因素着手,把影响质量的因素找出来,按标准程序方法使生产经营活动的全过程处于受控制状态,教育全体员工树立“质量第一”的思想,把各项工作纳入“精益求精”的管理轨道,用企业文化统一员工的意志产生凝毅力、亲和力、凝固员工的智慧力量为企业做贡献!工序上的管理,应突出对员工树立“下一道工序是用户”的思想意识,这对于相互支持和相互理解是非常重要的,要一环扣一环互相牵制、各自做好自己工序,互相促进,共同来提高,从整体上来解决质量问题。此外,还应重视辅助质量管理,要求对面料、辅料、动力、燃料、工艺、水电、蒸气、设备等要保证质量运转正常,这些能否及时、准确、顺利配合,保障使流水作业连续不能间断,直接关系到产品的质量和产量。生产管理的过程,就是向市场和顾客提供服务的过程。企业在管理中,应全面树立“为企业服务,为顾客着想”的服务理念、尊重企业标准制度和市场运作规范,建立高素质的售后服务队伍和完善的售后服务制度,加大服务力度,定期访问顾客,设计生产更优更好的产品,以满足市场需求和顾客品味要求。首先,产品质量取决于工作质量,它是各部门、各环节工作质量的综合反应,质量管理既要抓产品质量,更要抓工作质量,用企业文化、企业精神培养员工积极思维,使优秀员工凝聚起来为企业贡献智慧才能。其次,人人做好服务,在企业内部要求员工,保证本工序的质量,还要想到下工序的质量,为下工序提供方便。同时下工序要向上工序反映质量上的意见并提出要求,帮助上工序找出问题和存在的原因。让消费者满意,首先让员工满意,为顾客细致周到做好各项服务工作。最后,应强化质量检验,实事求是,增强责任心,坚持原则,落实三检制,即操作工人自检、前后工序互检,专业人员专检,再辅以巡检人员。质量检验项目包括原辅材料入库前、库存原材料的保管状况、领用原辅材料、设备、成品检验、包装过程、出厂检验等,对各项认真仔细、按技术、工艺标准检验,收集各质量检验的有关资料进行加以整理、分析,采取对策及时处理发生问题,从而达到控制、预防工序的质量,使质量管理从事后把关发展到事先预防上来。一个优势企业品牌,必须有名牌产品、优势技术作支撑,必须不断通过产品技术创新来强化服装业的名牌产品、特色产品,积极推动实施品牌战略,进一步建立完善企业自有的技术创新体系,以高效技术和先进工艺为依托,增强企业的技术实力,创建有活力的品牌文化。品牌和信誉是企业的无形资产,是企业重要的战略资源,是企业成长的生命,在重视规模的同时,重视缩小与同行业一流企业的信誉差距,强化品牌意识、品牌精神内涵,品牌文化智慧和道德的力量。品牌发展到一定程度时,将是企业身份地位的象征。先进的企业文化,包括精神文化、制度文化、行为文化、形象文化,企业环境文化、产品文化、企业箴言等。它是企业长远发展的有力保障。企业文化和企业精神是以企业自身发展确定的价值观念和行为为准则,它能起到鼓舞士气,规范行为方式,促进目标实现。培养有才有德的优秀人才,人才是成就事业的关键,人才资源决定企业的竞争优势,对员工高素质的专业技能培训,使企业向高品质化发展,员工的知识技能是激发创新力和提高企业竞争力的前提,对人力资本的投资,可增强企业的凝聚力,把企业的发展战略、经营理念、管理模式、价值取向、文化氛围等带给每位员工,使员工在工作中体会自身价值和挑战乐趣,为企业提供新的思想、知识、信息、技能,凝聚成为一股强大的力量而勇往直前。企业实现品牌战略,必须把培养、引进优秀人才作为一项重点工作来抓。成功的企业必然有高素质的员工,高素质的员工来源于人才引进和现有人员的培训提高,要为企业经营战略的各个阶段提供各类优秀人才,而员工培训成为人力资源开发的主要途径,以人为本为员工搭建一个快乐成长的平台。合万人之私,以成一人之公,人是无形资产的来源,也是无形资产的载体。在多元化的社会当中,价值观是多元化的,每个人的价值观不同。要激发不同价值观的员工内在动机引发到统一行动的工作中去。管理者应在管理中将员工个人成长发展的需求和愿望融入企业目标并与个人目标达成共识,而使员工在实现企业发展目标的同时实现个人目标。必须有一支规模较大,素质过硬,结构合理的人才队伍作保证,从企业实际出发,加强优秀企业队伍的建设,以内部培训为主,适当引进急需的优秀人才,不断改善人才队伍的结构,为人才成长创造良好的环境,为实施品牌战略奠定坚实的人才保障。在一个企业里,如果每个员工都有一种“这是我们的公司”的意识,如果企业经营者把员工看作是同舟共济的“伙伴”,并以感恩心创造和谐,那么这个企业必定是一个成功的企业,是一个共同创造繁荣和幸福的企业。总之,企业只要坚持不懈地实施品牌战略,并以此战略为中心,继续实施“创新带动、质量立企、科教兴企”的战略,积极推行以人为本,人才强企的战略,用智本管理,更好地协调智力资源与物力资源的管理与开发创新,企业就一定能在激烈的市场竞争当中,高举品牌旗帜,不断创新管理,理性思考,创造出响亮的国际品牌。 -
报告黄瓜内生细菌对黄瓜灰霉病的生物防治研究?? 基金项目:教育部长江学者和创新团队发展计划资助项目(No.200558);杨凌农业科技开发基金项目(2004JA08)。
出版时间:2007灰霉病是保护地蔬菜栽培中危害十分严重的病害,传统的化学防治造成了严重的农药残留和环境污染。应用微生物进行生物防治能够克服上述缺点,是一种安全、有效和环保的方法。本研究旨在从黄瓜植株内分离、筛选能够抑制灰霉病的拮抗细菌,并测定拮抗菌株在不同处理下对灰霉病的防治作用。主要结果如下:通过平板对峙培养筛选出8株对黄瓜灰霉病菌具有较强拮抗作用的细菌,再对这8株菌发酵滤液的抑菌活性进行测定,选出抑制效果最好的两个菌株B12和B13,抑制率分别为84.0%和81.8%。在离体叶片上,B12、B13发酵滤液对灰霉病菌的扩展均有较强的抑制作用,抑制率分别为83.2%和81.4%。两菌株活性产物可引起病原菌菌丝扭曲,菌丝膨大成串珠状分枝,顶端膨胀后细胞壁破裂,原生质外溢,产生溶菌作用。B12、B13发酵液对于灰霉病菌孢子的萌发具有强烈的抑制作用。在孢子萌发试验中,经B12、B13发酵液处理的孢子萌发率仅分别为5.5%和8.6%,滤液对孢子萌发的抑制效果与发酵液相近。将两菌的发酵滤液置于不同的温度和pH环境下处理,当温度在100℃以下、pH值在6~9时,滤液的抑菌效果表现出较强的稳定性。在温室试验中,两菌发酵液对灰霉病有较好的预防效果,B12、B13的保护防效分别为70.5% 和68.7%,治疗防效分别为51.2%和47.8%。
