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报告Cloning and Sequence Analysis of CP Gene of Potato Virus Y Derived from Different Hosts in Anhui Province
出版时间:2007采集安徽不同地区感染马铃薯Y病毒(PVY)的烟草和马铃薯病样,购买美国Agdia公司PVY-N株系试剂盒进行ELISA检测,部分病样检测结果呈阳性,TRIZOL法提取总RNA,根据PVY CP基因两侧的保守序列设计特异性引物CP/F、CP/R,M-MLV酶逆转录得cDNA第一链,RT-PCR扩增,克隆至pGEM-T Easy载体,转化大肠杆菌TG1,筛选阳性克隆并测序。PVY-CP-4(来自烟草病样)和PVY-CP-7(来自马铃薯病样)基因全长均为801bp,编码267个氨基酸。利用DNAStar软件对来自两个不同寄主的PVY-CP基因进行序列比较,PVY-CP-4和PVY-CP-7的核苷酸序列相似性为92.1%,这两个PVY的CP序列与已报道的18个其他PVY CP序列相似性分别为88.5%~99.4%和90.9%~98.3%。构建PVY-CP-4和PVY-CP-7与其他18个PVY CP序列的系统关系树,可以看出PVY-CP-4和PVY-CP-7各自归为一类,两者之间亲缘关系较远。PVY-CP-4基因与PVYO(EF026074)亲缘关系最近,而PVY-CP-7基因与PVYNTN(AJ890347)亲缘关系最近,实际上,PVYNTN株系是PVYN株系的一个变种。病毒的外壳蛋白基因在寄主症状、病毒长距离和细胞间运输、病毒的介体传播等方面起着重要的作用。因此,病毒的外壳蛋白基因的同源性在病毒株系的划分中已成为主要依据之一。根据ELISA检测结果,PVY-CP-4和PVY-CP-7均属于PVYN株系,这与PVY-CP-7的分子鉴定结果相吻合,但与PVY-CP-4的分子鉴定结果不相符。Potyvirus 属是已确定的植物病毒属中成员最多的一个,有103个确定成员和92个暂定成员,传统分类标准如种传效率、交叉保护、蚜虫介体种类、寄主范围和症状学等至今仍被用作种的分类标准(Bvrunt,1992;Shukla 等,1994)。据报道(Bos,1992;Shukla 等,1992),原来最常用的用于区分相关病毒的标准——血清学关系很不可靠,在现今病毒分类上一般仅具参考价值。目前普遍认为,只有病毒的基因组结构和序列才能真实地反映植物病毒种的分类本质(Ward等,1995)。因此,根据本实验所测出的PVY CP的核甘酸序列比对结果,安徽地区烟草寄主上感染的PVY应属于PVYO株系,而马铃薯寄主上感染的PVY应属于PVYNTN株系。 -
报告Cloning and Analysis of 3′-terminal Genomic Sequence of a Beet Mosaic Virus Isolate from Lettuce*
出版时间:2007甜菜花叶病毒(Beet mosaic virus,BtMV)属于马铃薯Y病毒属(Potyvirus)。它是一个世界性的病原,主要由蚜虫以非持久方式传播,并可以通过机械接种和嫁接方式传播,但不能通过种子以及花粉传播。20世纪50年代末德国首次报道了BtMV在甜菜上的发生[1]。1981年Liu等报道了BtMV在北京地区菠菜上的发生,是我国对BtMV的首次报道[2]。BtMV寄主主要是藜科植物,可系统侵染甜菜(Beta vulgaris),局部侵染菠菜(Spinacia oleracea)、苋色藜(Chenopodium amaranticolor)、昆诺藜(C.quinoa)等。目前仅有美国华盛顿分离物、德国分离物、中国新疆以及内蒙古分离物的全序列以及英国和斯洛伐克少数几个分离物3′端部分序列被报道,这些分离物均来源于甜菜[3,4]。莴苣(Lactuca sativa)属于菊科莴苣属,一年或两年生草本植物。莴苣是我国常见蔬菜之一,在我国大部分地区均有种植。2007年,我们在泰安郊区蔬菜种植区调查病毒病时,发现莴苣上发生病毒病较为严重。感病植株叶片呈黄绿相间的花叶症状,植株严重矮缩。初步的血清学试验表明,该分离物是马铃薯Y病毒属病毒。用针对该属病毒的兼并引物进行RT-PCR扩增,获得此病毒基因组3′端片段,经序列分析表明为BtMV。1.1.1 供试毒源 莴苣病叶样品采自山东泰安郊区菜田,经枯斑寄主昆诺藜(C.quinoa)单斑分离3次后繁殖保存于本生烟(Nicotiana benthamiana)上,并取发病叶用硅胶保存。1.1.2 载体、试剂与菌株 大肠杆菌DH5α由本实验室提供;Trizol购自invitrogen公司;PCR产物回收试剂盒购自博大泰克公司;M-MLV反转录酶、RNase抑制剂(HPRΙ)购自Promega公司;无RNase的水,克隆载体pMD18-T、Taq DNA 聚合酶购自TaKaRa公司;硝酸纤维素膜购自Pall Gelman公司产品;碱性磷酸酯酶标记的A蛋白购自Sigma公司;其他化学试剂均为国产分析纯;BtMV的血清由中国农业大学韩成贵教授提供,其余抗血清由本实验室制备。1.2.1 SDS-琼脂免疫双扩散试验 以常规琼脂双扩散法进行,1g病叶样品加1ml PB缓冲液再加1ml 3%SDS研磨,将汁液6000r/min离心5min。取上清液适量加到琼脂糖凝胶中,与黄瓜花叶病毒(Cucumber mosaic virus,CMV)、烟草花叶病毒(Tobacco mosaic virus,TMV)、芜菁花叶病毒(Turnip mosaic virus,TuMV)、马铃薯X病毒(Potato virus X,PVX)、马铃薯Y病毒(Potato virus Y,PVY)的抗血清反应,加样后在37 ℃下放置,12h后观察结果。1.2.2 RNA提取 采用 Trizol法(Invitrogen)提取总RNA。取0.2g具典型症状病叶于干热灭菌的研钵中,液氮研磨至粉末,迅速转移至1.5ml离心管中,加1ml Trizol剧烈振荡,静置10min;加200μl氯仿后充分振荡15s,静置5min,于4℃、12000r/min离心15min;将上清转移至另一1.5ml离心管中,加入等体积冰冷的异丙醇混匀,室温放置10min,4℃、12000r/min离心10min,沉淀用DEPC处理灭菌水配制的75%乙醇洗涤;室温干燥,加入适量无RNase的水溶解RNA,-80℃保存备用。1.2.3 RT-PCR扩增 以提取的总RNA为模板,在Oligo d(T)引物引导下利用M-MLV反转录酶合成第一链cDNA。用针对马铃薯Y病毒属病毒3′端序列设计的简并引物Sprimer和K11465(表1),扩增病毒RNA基因组的3′端序列。扩增条件如下:94℃预变性3min;94℃变性30s,60℃退火30s,72℃延伸2min,30个循环;72℃延伸10min。扩增产物经1%琼脂糖凝胶电泳检测。1.2.4 PCR产物的克隆与测序 PCR产物回收后与pMD18-T连接,连接产物转化大肠杆菌DH5α感受态细胞,提取质粒,经PCR扩增和酶切鉴定为阳性的重组质粒送北京英俊有限公司测序。NamePrimersequenceTmReferencesOligod(T)5′-GGTCGACTGCAGGATCCAAGC(T)15-3′[5]K114655′-GGTCGACTGCAGGATCCAAGC-3′68[5]Sprimer?5′-ATAGGATCCCTGCAGGGBAAYAAYAGYGGDCARCC-3′69~78[6]Table 1 Primers used for cDNA synthesis, PCR amplification and DNA sequencing1.2.5 Western blotting分析 参考文献中[7,8]的方法,用Western blotting验证采集的莴苣样品、单斑分离后保存在本生烟上的样品与BtMV血清的关系。第一抗体为原核表达制备的抗血清,第二抗体为碱性磷酸酯酶标记的A蛋白,用BCIP/NBT显色。1.2.6 DNA序列比较与分析 将所得DNA序列输入GenBank进行BLAST检索,采用DNAStar和MEGA3.1软件对所得到的核苷酸序列与GenBank中收录的BtMV分离物的相应序列进行比较和分析,构建系统进化树。感病莴苣植株表现明显的矮缩症状,叶片呈黄绿相间的花叶症状,叶片变小并伴有明显的皱缩(图1)。Figure 1 Symptoms of lettuce infected by BtMV-SDSDS-琼脂扩散试验结果显示样品与TuMV抗血清和PVY抗血清均有沉淀反应,说明样品中含有马铃薯Y病毒属的病毒。以提取的病叶样品总RNA为模板,经RT-PCR扩增,得到长度约为1.7kb的目的片段(图2),与预期的大小相一致。扩增产物经纯化后克隆到pMD18-T载体上。经蓝白斑筛选和酶切鉴定,得到含有目的片段的重组子。Figure 2 RT-PCR amplification of 3′-cDNA of BtMV-SD通过测定2个PCR反应克隆到的片段序列,确定了插入片段的核苷酸序列长度1629bp。序列已登录GenBank,登录号为EF633501。扩增产物包含630bp NIb编码序列、831bp CP编码序列及168bp非编码区序列(3′-UTR)。在由此推导其氨基酸序列中,NIb与CP的切割位点为VTYQ/G,符合多数马铃薯Y病毒属病毒NIb与CP切割位点的保守基序为VXXQ的特征[9]。NIb氨基酸序列中存在依赖RNA的RNA聚合酶(RNA-dependent RNA polymerase,RdRp)保守氨基酸序列GDD。CP序列中含有蚜虫传播马铃薯Y病毒属病毒所必需的DAG基序。分离物BtMV-SD 3′ 端序列与GenBank中已登录的斯洛伐克(BtMV-SL,AF363639)、美国华盛顿(BtMV-Wa,AF206394)、中国内蒙古(BtMV-IM,DQ674263)、中国新疆(BtMV-XJ,DQ674264)、英国(BtMV-UK,AF203540)、中国新疆2(BtMV-XJ2,DQ345522)以及未登录的德国(BtMV-G)[10] 6个BtMV分离物的核苷酸序列同源性分别为98.8%、91.1%、98.6%、97.7%、98.5%、97.5%、98.8%,氨基酸序列同源性分别为99.2%、94.3%、99.5%、98.4%、99.4%、98.9%、99.5%。除了BtMV之外,马铃薯Y病毒属中的落葵皱缩花叶病毒(Basella rugose mosaic virus,BaRMV)(DQ394891)与BtMV-SD的核苷酸同源性最高,为63.5%。据CP编码序列构建的系统进化树表明,8个分离物可以分为两组:欧亚大陆组(Euroasia group)与美洲组(America group),结果与Xiang等[4]的相一致。其中美国华盛顿分离物BtMV-Wa位于美洲组,包括BtMV-SD在内的其他分离物位于欧亚大陆组(图3)。BtMV-SD与BtMV-SL位于同一分支,两者在进化关系上最为接近。Figure 3 Phylogenetic tree based on CP-coding sequence of 8 BtMV isolatesWestern blotting分析表明,自然发病的莴苣样品以及接种发病的本生烟样品均与BtMV血清有较强的特异性反应,而本生烟健康植株则无反应。Figure 4 Western blotting analysis of BtMV-SD在用有些病毒的多克隆抗体检测样品时,经常会出现交叉反应,这在马铃薯Y病毒属病毒中也非常普遍[11]。本研究的样品在SDS-琼脂免疫双扩散试验中与TuMV和PVY的抗血清均有沉淀反应,表明该分离物可能有马铃薯Y病毒属的病毒。通过比较病毒基因组3′端约1.7kb的序列,证明该病毒分离物为BtMV。Western blotting进一步证实了该结果。病毒病是莴苣生产中的主要病害之一。病毒的复合侵染在田间也非常普遍。已报道侵染莴苣的病毒有莴苣花叶病毒(Lettuce mosaic virus,LMV)、蒲公英黄花叶病毒(Dandelion yellow mosaic virus,DYMV)和CMV。先前报道BtMV寄主主要是甜菜、菠菜等藜科植物,而不易侵染莴苣。本文首次报道BtMV在自然条件下能够侵染莴苣并造成危害。 -
报告苹果褪绿叶斑病毒干扰性hp-dsRNA基金项目:湖北省自然科学基金资助项目(2006ABA162)。
出版时间:2007RNA介导的病毒抗性主要是基于转录后基因沉默(Post-transcriptional gene silencing,PTGS)作用,在真菌、植物和动物中有PTGS相关的基因存在,这些基因沉默现象可统称为RNA干扰现象(RNA interference,RNAi)。许多证据表明,RNA沉默是由双链RNA(dsRNA)所引发的,且需要细胞内的多种酶参与。基于dsRNA在RNA沉默中的诱导作用,构建能转录后形成dsRNA的载体,转化植物后可有效诱发基因沉默。苹果褪绿叶斑病毒(Apple chlorotic leaf spot virus,ACLSV)是苹果、梨和多种核果类果树上发生普遍的一种病毒,可降低树势和影响果实品质。本研究根据GeneBank上已登陆的ACLSV序列设计合成了一对引物,根据载体pDS1301的限制性内切酶图谱,在引物的两端分别引入了两个不同的限制性内切酶识别位点。以总RNA或dsRNA为模板,通过RT-PCR扩增获得来源于砂梨的2个ACLSV分离物的大小为358bp的片段,该片段位于ACLSV cp基因高度变异区。将扩增片段克隆到载体pMD18-T,筛选阳性克隆后提取质粒,经Kpn I/Bgl II和Spe I/Sac I分别对目标片段及载体pDS1301酶切后,在T4连接酶作用下,将克隆片段以正向和反向方式分别插入植物表达载体pDS1301一内含子两端的多克隆位点,构建了可转录后形成dsRNA的载体pDR358-SMJ和pDR358-HH。将重组质粒转化根癌农杆菌EHA105感受态细胞后,采用叶盘共培养的方法转化5~6叶期的健康西方烟叶片,经潮霉素抗性筛选获得转基因西方烟植株。从获得的转基因西方烟植株提取总DNA,根据载体pDS1301多克隆位点两侧的序列合成特异引物,采用 PCR方法对这些植株进行了鉴定,已得到了转R358-SMJ的西方烟49株、转R358-HH的西方烟12株(图1)。图1 部分转基因西方烟的PCR鉴定 -
报告ASPV cp基因克隆及植物基金项目:湖北省自然科学基金资助项目(2006ABA162)。
出版时间:2007苹果茎痘病毒(Apple stem pitting virus,ASPV)是侵染苹果和梨树的主要病毒之一,可导致苹果和梨的生长势下降,并影响其果实产量和品质。本研究在生物学、血清学和分子生物学鉴定的基础上,筛选出侵染砂梨的APSV毒源材料。参照已报道的ASPV全基因组核苷酸序列设计合成引物,以来源于砂梨(6-1-13)ASPV的 dsRNA为模板,RT-PCR扩增获得大小为1328bp特异性扩增条带,并对扩增产物进行纯化、克隆和序列测定。序列分析结果表明,其核苷酸序列与国外在GenBank上登录的14个ASPV分离株的同源率为82%~88%。将克隆获得的目的基因与pET28c连接得到原核表达载体pET28c-ASPV cp,并在大肠杆菌BL21(DE3)中成功诱导该基因表达,表达蛋白大小约44kDa。将表达正义链和反义链的该病毒分离物cp基因cDNA分别与植物表达载体pCAMBIA1301连接,转化大肠杆菌DH10B的感受态细胞,经过PCR和双酶切鉴定和筛选阳性克隆,成功构建了ASPV cp基因的正义链和反义链植物表达载体pCAMBIA1301-ASPV cp+和pCAMBIA1301-ASPV cp-。将重组质粒转化根癌农杆菌EHA105感受态细胞后,采用叶盘共培养的方法转化5~6叶期的健康西方烟叶片,经潮霉素抗性筛选和PCR鉴定,获得88株西方烟转化植株,其中ASPV cp基因正义链的西方烟植株68株,表达cp基因反义链的西方烟植株20株。 -
报告Identification of Pathogens Causing Leaf Spot Disease on Zingiber officinale Rosc*
出版时间:2007姜(Zingiber officinale Rosc.)为姜科(Zingiberaceae)、姜属(Zingiber),多年生草本植物,是一种既能作为调味蔬菜,又能入药的重要的经济作物。山东省是我国姜的主要产区,近年来,由于多数品种长期无性繁殖及连年重茬种植,出现了一种严重影响姜产量和质量的病害,该病害主要为害姜叶部,发病初期呈现水浸状小斑点,随后变成黄色,逐渐扩大成为椭圆形、近圆形或不规则形的白色病斑,边缘则为黄褐色,病斑继而彼此融合,导致整叶干枯;在老熟病斑上可见大量黑色小颗粒。目前国内外有关文献报道认为,引起姜叶斑病的病原菌为姜叶点霉(Phyllosticta zingiberiHori)[1],白金铠[2]在《中国真菌志》中描述过Phyllosticta zingiberi的形态特征,而Mathur[3]曾提到Phyllosticta zingiberi T.S.Ramakr.为Phoma zingiberi Khune的基原异名,但关于Phoma zingiberi的产孢细胞等形态特征及ITS序列分析未见报道。由于茎点霉属(Phoma)真菌与叶点霉属(Phyllosticta)真菌有诸多类似的地方,如分生孢子器和分生孢子的形态、颜色、大小等。因此,Phoma和Phyllostica两属间的分类及属下种的分类问题一直存在着许多争议。Saccardo[4]认为,两者的主要区别在于寄生部位的不同,即Phoma寄生于植物叶以外的部位,而Phyllosticta寄生于植物叶片上,这种主观的划分受到许多真菌学家的批评。由于产孢方式是Phyllosticta和Phoma两属共同具有的稳定特征。因此,目前已作为被多数学者所接受的分类标准。对于植物病原真菌,传统的分类方法多以真菌的形态特征为依据,而近年来分子生物学手段的应用为真菌的分类鉴定提供了更多遗传信息方面的依据。核糖体基因内转录间隔区(Internal Transcribed Spacer,简称ITS)在真菌种间存在丰富的差异,已广泛应用于真菌亲缘关系较近分类群的系统发育研究。目前,对于形态学上难以区分的Phoma和Phyllosticta两属真菌,尚未开展ITS序列的比对研究,其ITS序列资源也有待进一步丰富。本文发现的病害症状与已报道的由Phyllosticta zingiberi引起的姜叶斑病症状基本一致。为了正确鉴定分离到的姜叶斑病的致病菌,本文利用传统的形态学观察并结合分子手段对该病原菌的分类归属进行了研究。姜病叶采自山东省生姜主要产地莱芜市姜田。1.2.1 病菌的培养及光镜观察 将发病叶片表面消毒后置于PDA培养基上培养4~5天,从菌落边缘取直径为5mm的菌落圆片进行纯培养,在Olympus光学显微镜下观察并描述分生孢子器、分生孢子、产孢细胞形态特征,用显微测量尺测定分生孢子器及分生孢子的大小。1.2.2 透射电镜样品制备与观察 将新鲜的感病叶片切成小于0.5cm×0.5cm的材料,固定于3%戊二醛中,再用1%锇酸二次固定,乙醇梯度脱水、Epon812树脂浸透、包埋、超薄切片,经醋酸双氧铀、柠檬酸铅双重染色,JEM-1200EX透射电镜观察、拍照。将配制好的孢子悬浮液(低倍镜下每视野约30个孢子)喷洒在4~5叶期健康的姜新叶上,接种后套袋保湿48h。定期观察并记录发病情况和症状特点。取病斑上产生的子实体镜检,并从发病组织中再次分离致病菌,观察并描述病原菌形态特征。菌丝染色体DNA的提取参照何月秋[5]的方法并做适当的修改,质粒提取采用碱裂解法,大肠杆菌Escherichia coli DH5α感受态制备、连接、转化等参考《分子克隆实验指南》(第三版)[6]。以总DNA为模板,以通用引物ITS1:5′-TCC GTA GGT GAA CCT GCG G-3′和ITS2:5′-GCT GCG TTC ATC GAT GC-3′,ITS3:5′-GCA TCG ATG AAG AAC GCA GC-3′和ITS4:5′-TCC TCC GCT TAT TGA TAT GC-3′分别扩增ITSI和ITSII片段。PCR反应程序如下:94 ℃预变性3 min,94 ℃变性1min,50 ℃退火1min,72 ℃延伸30s,30个循环,最后72℃延伸10min。PCR产物连接到pMD18-T(大连宝生物工程有限公司),转化E.coli DH5α,经鉴定的重组质粒送上海英俊生物技术公司测序。该病原菌在PDA培养基上菌丝初为白色,后变为褐色,25 ℃培养20~25天后,逐渐出现分生孢子器。光镜观察分生孢子器为球形、扁球形,暗褐色,直径55~135μm,高75~130μm,器壁褐色,由3~5层细胞组成,壁厚9~13μm,内壁形成产孢细胞,上着生分生孢子;分生孢子椭圆形、卵形,无色,单胞,两端各含有一油球,5~8.5μm×2~4.5μm,其形态与报道的Phyllosticta zingiberi基本一致(Figure 1),但光镜和透射电镜观察其产孢方式为内壁芽生瓶梗式(eb-ph)(Figure 2)。Figure 1 Picnidium(Micro)(×400)Figure 2 Morphology of conidiogenous cell(Micro)(×1 000)用分生孢子悬浮液接种姜嫩叶后,发病症状和病原菌形态特征与自然发病株相同。取病健交界处组织再分离,其培养性状和形态特征与第1次分离结果一致。根据柯赫氏法则,接种菌即为姜叶斑病的致病菌。2.3.1 菌丝染色体DNA的提取与核糖体DNA ITS的PCR扩增 用改进的CTAB法提取该菌染色体DNA,琼脂糖凝胶电泳检测。采用真菌核糖体基因ITS区域通用引物ITS1和ITS2、ITS3和ITS4分别扩增了茎点霉的ITSI和ITSII,1%琼脂糖凝胶电泳检测结果均为单一条带,大小分别为224bp和343bp。2.3.2 核糖体DNA ITS序列分析 将克隆到的ITSI和ITSII测序后进行拼接,确定了ITS片段的核苷酸序列(Genbank登录号为EF408240)。用DNAStar软件对所得序列进行编辑和排序比对,得出该病原菌ITS序列与叶点霉的同源性最高为58.7%,与茎点霉的同源性最高为95.6%。利用MEGA3.1软件分析核苷酸组成并计算种间遗传距离,结果显示该病原菌与茎点霉亲缘性更大。以往报道认为,引起姜叶斑病的病原为Phyllosticta zingiberi Hori,Hara记载并描述了Phyllosticta zingiberi Hori的形态特征:叶上病斑圆形、不规则形,中央灰白色,直径1~3mm;分生孢子器球形、扁球形,暗褐色,直径50~120μm,分生孢子椭圆形、卵形,单胞,无色,两端各含有一油球,5~9μm×2.5~3.5μm。后人Sawada[7]对中国台湾省姜叶上的Phyllosticta zingiberi Hori、戚佩坤等[8]对广东姜叶上的Phyllosticta zingiberi Hori以及本研究对分离菌的描述与上述基本一致,应视为同种。Ramakrishnan[9]描述的印度姜叶上的Phyllosticta zingiberi T.S.Ramakr.的形态特征为,叶上病斑卵圆形,中央灰白色,可形成穿孔,9~10μm×3~4μm;分生孢子器球形,78~150μm,分生孢子无色,椭圆形,3.7~7.4μm×1.2~2.5μm,两端各含有一油球,此形态与Phyllosticta zingiberi Hori基本一致。因此,Phyllosticta zingiberi T.S.Ramakr.应视为Phyllosticta zingiberi Hori的同物异名。Sutton[10]通过对Phoma和Phyllosticta产孢方式的研究,认为Phoma是内壁芽生瓶梗式(eb-ph),Phyllosticta是全壁芽生单生式(hb-sol),这与Dictionary of the fungi第九版[11]对两属产孢方式的描述一致,而吕国忠电镜观察结果显示,两属的产孢方式相同,均为全壁芽生环痕式(hn-ann),同样,王琪[12]对龙眼叶点霉(Phyllosticta dimocarpi)研究结果也是全壁芽生环痕式(hn-ann),周永力[13]则认为Phyllosticta为内壁芽生瓶梗式(eb-ph)。因此,有关两属的产孢方式目前尚有争论。本研究对该病原菌的光镜和电镜观察结果表明,其产孢方式为内壁芽生瓶梗式(eb-ph),符合Kendrick等对Phoma产孢细胞特征的描述,ITS序列分析结果发现,该菌与Phoma ITS序列同源性高达95.6%,远远高于与Phyllosticta ITS序列的同源性(58.7%)。本研究结果支持Mathur的观点,认为Phyllosticta zingiberi T.S.Ramakr.为Phoma zingiberi Khune的基原异名。由于Phyllosticta zingiberi T.S.Ramakr.是Phyllosticta zingiberi Hori的同物异名。因此,引起姜叶斑病的病原菌应为姜茎点霉(Phoma zingiberi Hori)。致谢:山东农业大学张天宇教授、张修国教授对本研究提供了热情帮助,并对论文修改提出了建议。 -
报告Study on the Differentiation in Pathogenicity of Different Isolates of Botrytis cinerea Pers to Tomato
出版时间:2007由灰葡萄孢(Botrytis cinerea Pers.)侵染引起的番茄灰霉病是当前番茄生产上重要病害,尤以设施栽培条件下发生较重,一般引起产量损失20%~30%。灰葡萄孢的寄主很广,已经报道过的寄主至少有235种,能为害多种粮食作物、经济作物、蔬菜、果树和观赏植物[1]。随着高效农业的发展,温室中蔬菜、花卉、果树轮作、间作日渐频繁,使得同种作物间、不同种作物间交互感染成为可能[2~3]。为了明确来自其他寄主植物的灰葡萄孢菌株能否侵染番茄,不同寄主来源的菌株对番茄的致病力是否存在差异,从而为生产上包括番茄灰霉病在内的灰葡萄孢所致植物灰霉病的综合治理提供参考依据,作者对不同寄主来源的灰霉菌株对番茄的致病力及其分化进行了研究。2005~2007年,从合肥市、蚌埠市、长丰县、和县等地区的番茄、辣椒、草莓、葡萄等发病寄主上分离鉴定获得18个灰葡萄孢菌株,采用菌丝块创伤接种法,分别测定了上述不同寄主来源的灰葡萄孢菌对番茄果实和叶片的致病力。结果表明,所有供试菌株接种番茄果实后均可引起发病,但不同菌株所致病斑的平均直径有显著差异,提示灰葡萄孢菌株间对番茄果实的致病力存在明显分化。按照在番茄果实上所致病斑的平均直径大小可将供试菌株划分为致病力较强、致病力中等和致病力较弱3种类型。总体来说,来自番茄的菌株对番茄果实的致病力较强,来自草莓、葡萄和辣椒的菌株对番茄果实的致病力较弱,但来自相同寄主的菌株间致病力也存在差异,菌株致病力差异与菌株地域来源无明显相关。供试灰葡萄孢菌株接种番茄叶片后,除CF1外,均可引起番茄叶片发病,但不同菌株所致番茄叶片病斑的平均直径也有显著差异,但菌株致病力差异与菌株的寄主和地域来源无显著相关。本文关于灰葡萄孢不同菌株致病力存在差异的研究结果与Kersises[4]的报道一致。Lorenz[5]和Kersises[4]认为灰葡萄孢不同菌株致病力分化的原因可能与异核现象有关。作者也曾采用细胞核染色法观察到部分灰葡萄孢菌株菌丝细胞内存在多核现象,但这种多核现象与异核现象乃至致病力分化之间的关系尚不清楚。因此,有关灰葡萄孢不同菌株致病力分化的机制尚需进一步研究。灰葡萄孢菌株对番茄果实和叶片的致病力测定结果比较表明,除FQ外,其余各供试菌株对番茄果实所致病斑直径均比叶片病斑直径大,但各供试菌株接种番茄果实和叶片后所致病斑直径之间没有明显的相关性。作者认为,采用菌丝块创伤接种法测定灰葡萄孢菌对番茄的致病力时,以接种果实为宜;由于不同菌株的致病力差异较大,所以在番茄抗病性测定时,宜选用强菌株或混合菌株。本研究结果指出,来自辣椒、草莓、葡萄等其他寄主植物的灰葡萄孢菌株能够侵染番茄果实和叶片,意味着上述植物上的灰霉病菌(灰葡萄孢)可以成为番茄灰霉病的侵染来源,建议在番茄灰霉病的综合治理中应予以注意。 -
报告板栗生产技术
出版时间:2019板栗根深叶茂,适应性强,较耐干旱和瘠薄,栽培容易,管理方便,适宜在山区发展。对山区经济的振兴和生态环境的改善效果非常显著。板栗多为高大乔木,寿命较长,但结果较晚,实生树一般5~8年开始结果,15~20年进入盛果期,50~60年生结实最多,盛果期可延续百年以上。嫁接树2~3年即能结果。板栗为深根性果树,主根可深达4m,但大多数根系分布在20~80cm的土层内,根系分布深浅受土层厚薄的影响。大树根系的水平分布可达1.5m以上,水平根扩展范围可为冠径的3~5倍,强大的根系是板栗抗旱耐瘠薄的重要因素。侧根细根发达,须根前端常有白色菌丝呈分枝状,为板栗的共生菌根,对板栗的生长和结果有显著的促进作用,同时也是板栗适应性强的重要原因。板栗根系受伤后再生能力弱,需经较长时间才能萌发新根,在栽植时要少伤根,特别是大根。板栗的芽按性质可分为叶芽、完全混合芽、不完全混合芽和副芽(休眠芽)四种。幼旺树叶芽着生在旺盛枝条的顶部和其中下部。进入结果期的树,多着生在各类枝条的中下部。芽体瘦小,芽顶尖,茸毛较多。多数品种不经短截不萌发或萌发形成弱枝。完全混合花芽着生于结果枝顶端及其以下数节,芽体肥大,发育充实、饱满,芽形钝圆,茸毛较少,外层鳞片较大,部分品种在枝条的中下部也能形成完全混合花芽。完全混合花芽翌春萌芽后抽生的结果枝既有雄花序也有雌花序。不完全混合花芽一般着生于完全混合花芽的下部或较弱枝的顶端及下部,芽体比完全混合花芽略小,萌发后抽生带花序的雄花枝。副芽又称休眠芽或饮芽,着生在各类枝条的基部短缩的位节上,芽体极小,一般不萌发,呈休眠状态,寿命长。遇刺激或前部枝条衰老时,萌发抽生徒长枝。板栗的枝条分为营养枝、结果枝、结果母枝和雄花枝四种。①营养枝由叶芽或副芽萌发而成,不着生雌花和雄花。根据枝条生长势不同,可将其分为徒长枝、营养枝和细弱枝三种。徒长枝由枝干上的副芽萌发而成,年生长量50~100cm,生长旺,节间长,组织不充实是老树更新和缺枝补空的主要枝条,一般30cm以上的徒长枝通过合理修剪,3~4年后也可开花结果;营养枝又称发育枝,由叶芽萌发而成,年生长量20~40cm,生长健壮,无混合芽,是扩大树冠和形成结果母枝的主要枝条,生长充实、健壮的枝可转化为结果母枝,来年抽梢开花结果;细弱枝由枝条基部叶芽抽生,生长较弱,长度在10cm以下,不能形成混合芽,翌年生长很少或枯死。②结果枝是结果母枝上完全混合花芽萌发抽生的、具有雌雄花序能开花结果的新梢。从结果枝基部第2~4节起,直到第8~10节止,每个叶腋间着生柔荑雄花序。在近顶端的1~4节雄花基部,着生球状雌花簇。③结果母枝是指着生完全混合芽的1年生枝条。大部分的结果母枝是由去年的结果枝转化而来。此外,雄花枝和营养枝也有形成结果母枝的,结果母枝顶端一至数芽为混合芽,抽生结果枝,下边的芽较弱,只能形成雄花枝和细弱营养枝。④雄花序由分化较差的混合芽形成,大多比较细弱,枝条上只有雄花序和叶片,不结果。一般情况下,当年也不能形成结果母枝。北方板栗适于冷凉干燥气候,南方板栗适于温暖湿润气候。板栗要求年平均气温为10~15℃,生长期(4—10月)平均气温16~20℃;冬季不低于-25℃;开花期为17~27℃。一般情况下北方板栗产量高,品质好。板栗为喜光树种。当内膛着光量占外围光照量的1/4时枝条生长势弱,无结果部位。光照不足6h的沟谷地带,树冠直立,枝条徒长,叶薄枝细,老干易光秃,株产低,坚果品质差。在板栗花期,光照不足则会引起生理落果。建园时,应选择日照充足的阳坡或开阔的沟谷地较为理想。板栗树虽较抗旱,但在生长期对水分仍有一定要求。新梢和果实生长期供应适量水分,可促进枝梢健壮和增大果实。一般年降水量500~1000mm的地方最适于板栗树生长。板栗树对土壤适应性广泛,以土层深厚、有机质多、保水排水良好的砾质壤土最适宜板栗树生长。其适宜的土壤含水量相当于田间持水量的30%~40%。超过60%,易烂根,低于12%,树体衰弱,降至9%时,树可枯死。板栗对pH值的适应范围是4.6~7.0,以pH值5.5~6.5最为适宜;pH值超过7.6则生长不良。板栗正常生长,要求含盐量在0.2%以下,且板栗是高锰作物。pH值增高,土壤中锰呈不溶状态,影响其对锰的吸收,树体发育不良,叶片发黄。板栗自然分布区地势差别较大,海拔50~2800m均可生长板栗。我国南北纬度跨度较大,但在海拔1000m以上的高山地带,板栗仍可正常生长结果。处于温带地区的河北、山东、河南等地,板栗经济栽培区要求海拔在500 m以下,海拔800 m以上的山地出现生长结果不良现象。在山地建园对坡地要求不太严格,可在15°以下的缓坡建园,15°~25°坡地建园要修建水土保持工程。30°以上陡坡,可作为生态经济林和绿化树来经营。花期微风对板栗树授粉有利,但板栗不抗大风,不耐烟害,空气中氯和氟等含量稍高,栗树易受害。板栗园地应选择土层深厚、排水良好、地下水位不高的沙壤土、沙土或砾质土及退耕地等。土壤宜微酸性,要求光照充足,空气干爽。在山坡地造林应选择南坡、东南坡或西南坡为宜。整地一般在板栗栽植前的3个月进行。整地方法常采用水平梯地整地和鱼鳞坑整地。水平梯地整地就是沿等高线修水平梯地。以等高线为中轴线,在中轴线上侧取土填到下侧,保持地面水平,然后在地上挖坑栽树。该法适用于坡度在20°以下的山地。在坡度较陡或地形复杂的栗园,则可采用鱼鳞坑整地。其方法是:按照需要栽植的株行距,以栽植点为中心。由上部取土修成外高里低、形似鱼鳞状的小台田。无论哪种整地方法,挖穴时要将生土和熟土分开堆放,然后施入农家肥或秸秆、杂草、油渣等,再将熟土回填。造林宜采用1~2年生大苗,苗高不低于1m,地径不小于0.8~1cm,根系发达完整,生长健壮,无病虫害,无机械损伤。板栗栽植密度要根据地形、土质条件及品种特性而定。一般栽植密度以3m×4m为宜。挖苗时应尽可能少损伤侧根和须根,已经损伤的根应剪平伤口,主根过长时可以截短一些。如果挖出的栗苗不能马上定植或需远距离运输时,应进行泥浆蘸根,然后再假植或包装运输。栽植穴宽80cm,深80cm。每穴施入充分腐熟的有机肥料30~50 kg,将肥料和熟土混合均匀、踏实即可。栽植在秋季落叶到春季萌发前均可进行。除寒冷地区外,以秋季栽植为好。栽植要求是树要栽端,土要踏实,根要舒展,树苗埋土一半时,将树苗向上轻轻提一下,可使根系舒展。栽植的深度,保持原来的入土深度,栽好后踏实树干基部周围的覆土,并及时进行浇水,以提高栽植成活率。选用2种以上优良品种混合栽植,一般主栽品种与授粉品种比例是(4~8)∶1。休眠期进行耕翻,萌芽前每667m2施纯氮12kg,以促进花的发育,施肥后灌水。枝条基部叶刚展开由黄变绿时,根外喷施0.3%尿素+0.1%磷酸二氢钾+0.1%硼砂混合液,新梢生长期喷50mg/kg赤霉素,以促进雌花发育形成。开花前追肥,每667m2追施纯氮6kg,纯磷8kg,纯钾5kg,追肥后浇水;清耕栗园进行除草松土,行间适时播种矮秆1年生作物或绿肥。7月下旬至8月初,果实迅速膨大期施增重肥,每667m2施纯氮5kg,纯磷6kg,纯钾20kg,根据土壤含水量浇增重水。种植绿肥的果园翻压肥田或刈割覆盖树盘。采收前1个月或半个月间隔10~15d喷2次0.1%磷酸二氢钾。果实采收后叶面喷布0.3%的尿素液。10月施基肥,每667m2施充分腐熟的土杂肥3000kg+纯氮5kg。对空苞严重的果园同时土施硼肥,方法是沿树冠外围每隔2m挖深25cm,长、宽各40cm的坑,大树施0.75kg,将硼砂均匀施入穴内,与表土搅拌,浇入少量水溶解,然后施入有机肥,再覆土灌水。雄花序长到1~2cm时,保留新梢最顶端4~5个雄花序,其余全部疏除。一般保留全树雄花序的5%~10%。采用化学疏雄的方法是在混合花序2cm时喷1次板栗疏雄醇。雄花序长到5cm时喷施0.2%尿素+0.2%硼砂混合液,空苞严重的栗园可连续喷3次。当1个花枝上的雄花序或雄花序上大部分花簇的花药刚刚由青变黄时,在5∶00前采集雄花序制备花粉。当一个总苞中的3个雌花的多裂性柱头完全伸出到反卷变黄时,用毛笔或带橡皮头的铅笔,蘸花粉点在反卷的柱头上。也可采用纱布袋抖撒法或喷粉法进行授粉;夏季修剪并疏栗蓬,及早疏除病虫、过密、瘦小的幼蓬,一般每个节上只保留1个蓬,30cm的结果枝可保留2~3个蓬,20cm的结果枝可保留1~2个蓬。 -
报告枇杷生产技术
出版时间:2019早钟6号、长崎早生、森尾早生等。大五星、软条白沙、安徽大红袍、龙泉1号、龙泉6号、洛阳青、解放钟、大钟、太城4号、茂木、长红3号。枇杷喜温暖气候,要求年平均气温15~17℃,且无严寒,1月平均温度5℃,冬季最低温度不低于-5℃,少部分品种在年均温12℃以上即可正常生长;喜空气湿润,雨量充沛,要求年降水量在1000mm以上,夏末秋初干燥少雨天气有利花芽分化;光照充足有利于枇杷的花芽分化和果实发育;枇杷对土壤选择不严,一般沙质或砾质壤土、沙质或砾质黏土都能栽培;土壤pH值为5.0~8.5均可正常生长结果,最适宜pH值为6.0左右。育苗一般采用嫁接育苗。砧木可选择普通枇杷、石楠。砧木粗度达1cm左右时即可嫁接。常在春季2—4月进行;一般采用枝切接或枝腹接和剪顶留叶切接法。福建省农业科学院果树研究所试验推广的芽接育苗技术,效果很好。应选在土层深厚、土质疏松,坡度在30°以下的坡地。平地建园以选择在地势高,地下水位低,排水良好,土层深而疏松的沙质土壤上种植为好。坡地整地采用等高定点开坑或按等高线开垦成简易梯田后定点挖坑。种植前1~2个月要挖好种植坑,种植坑的规格为长1m、宽1m、深0.8m为好,先放进杂草、绿肥,并撒上石灰与表土拌匀,再放入农家肥与松细土拌匀回至高出地面30cm高。平地要把地下水位放在突出位置,多采用深沟高畦,开浅穴定植。枇杷定植可分为春植、冬植和秋植;在华南地区通常自12月至翌年2月进行冬植。在其他地区,春植在2—3月进行,秋植在9—10月进行。一般采用的种植株行距为:行距4~6m、株距3~4m。种植株数平地为每667m2 20~35株,山地为每667m2 35~40株;也可进行矮化密植。栽植苗木应选择品种纯正、粗壮、直立的嫁接苗,以营养杯苗或者带土团的苗木为好。栽苗时在种植坑中心挖一个小坑,把苗放入坑中,种下回土以不盖嫁接节位为宜,使根系均匀分布在坑底,同时,进行前后、左右对正,校准位置,使根系舒展。再将肥土分层填入坑中,每填一层都要用脚踏实,并随时将苗木稍稍上下提动,使根系与土壤密接,宜至定植穴上的土墩高出地面20~30cm。若栽前未剪成半叶的,应于栽后剪去叶片的一半。淋透定根水,并用杂草覆盖整个树盘保湿。施肥量以20~30kg/株的产量计算。(1)采果肥和基肥。5—6月采果后7~10d施厩肥30~40kg/株,麸肥2kg/株,磷肥2kg/株,钾肥1kg/株。(2)花前肥。8—9月施复合肥、麸肥各0.5~0.8kg/株。(3)壮果肥。2月上旬施复合肥、钾肥各0.6~1.0kg/株,麸肥1.0~1.5kg/株。枇杷采果后修剪的操作:疏剪过密枝、病虫害枝、枯枝、细弱的结果母枝,对远离主枝的结果母枝留基部10~15cm回缩更新,为避免结果部位外移,对抽发过长的春梢和强壮的结果母枝留基部5~6张叶片短截,促使腋芽萌发夏梢成为结果母枝,成枝力强的品种为培养健壮结果母枝,萌芽后要及时疏芽,留1~2个芽即可,结合疏花疏除结果母枝上抽发的部分秋梢和冬梢,每一结果母枝中只选留斜生、向外生长的新梢2个作翌年的结果基枝。基枝延伸以中心枝以下的第一侧枝作延长枝为主。(1)疏穗疏蕾。枇杷一般在10月中下旬至11月上旬进行疏花穗,疏花穗的时间在以部分花蕾露白而未开放时为宜;7~10年生植株全树留花穗80~100穗,对留下的花穗再疏部分花蕾;可摘除花穗上半部和基部支穗;每花穗保留中部相对集中的3~4个支穗;再把留下的支穗末端的花蕾摘除,只保留支穗基部的花蕾。(2)疏果。枇杷疏果一般在2月中下旬进行,大果品种每果穗保留端正果形、大小一致的果实3~4个;中果品种每果穗留果4~5个;小果品种每果穗留果6~9个。果实套袋的时期一般在最后一次疏果完毕,病虫害发生之前进行。套袋用的果袋,一般用旧报纸或牛皮纸制作。袋的形状大小依果的大小而定,一般为长方形,大小为20cm×13cm的,一张报纸可做8个;大小为30cm×20cm的,一张报纸可做4个,袋顶两角剪开,以利通气观察。不同熟期的果实,在套的袋上要有不同标志以便成熟时分期分批采收。套袋时宜从树顶开始,先把果穗基部3~4张叶片整理好束在果实上面,然后用纸直接包裹或制作成纸袋,把纸的长边对折成30cm×20cm,用订书机钉封住短边的一边即可,把果连叶包好。袋子口向下,用订书钉封口,纸袋要鼓起,避免套袋时果实与纸袋直接接触。
